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BRL細(xì)胞培養(yǎng)
一、貼壁細(xì)胞的消化法傳代
1、吸除或倒掉瓶內(nèi)舊培養(yǎng)液。
2、加入1ml左右消化液(胰蛋白酶或與EDTA混合液)輕輕搖動培養(yǎng)瓶,使瓶底細(xì)胞都浸入溶液中。
3、消化2-5分鐘后把培養(yǎng)瓶放置在顯微鏡下進(jìn)行觀察,發(fā)現(xiàn)原貼壁的細(xì)胞逐漸趨于圓形,在還未漂起時(shí),棄去消化液,加入培養(yǎng)液終止消化。
4、用吸管將貼壁的細(xì)胞吹打成懸液,分別接種到另外兩到三個(gè)培養(yǎng)瓶中,置37℃培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。第二天觀察貼壁生長情況。
二、懸浮細(xì)胞的傳代
1、直接傳代
① 讓懸浮細(xì)胞慢慢沉淀在瓶底后,將上清吸掉1/2-2/3。
② 用吸管吹打形成細(xì)胞懸液后,分別接種到另外兩到三個(gè)培養(yǎng)瓶中,置37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
2、離心法傳代
① 將細(xì)胞連同培養(yǎng)液一并轉(zhuǎn)移到離心管內(nèi),離心800-1000rpm,5分鐘。
② 去除上清,加新的培養(yǎng)液到離心管內(nèi),用吸管吹打使之形成細(xì)胞懸液。
③ 將細(xì)胞懸液分別接種到另外兩到三個(gè)培養(yǎng)瓶中,置37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
牙髄細(xì)胞中主要是成纖維細(xì)胞,貼壁生長。
傳代方法:
棄培養(yǎng)液(盡量吸干)
加基礎(chǔ)培養(yǎng)基配置的0.2%trypsin+0.02%EDTA
輕輕翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶使消化液浸過有細(xì)胞的瓶壁
重復(fù)4~5次
迅速吸去消化液
鏡下觀察細(xì)胞變圓回縮(約1分鐘)
加入*培養(yǎng)液(DMEM+10% FCS)終止反應(yīng)
吹打后,1:2接種,繼續(xù)培養(yǎng)。
我用的是DMEM低糖培養(yǎng)液,每次傳代前,將培養(yǎng)液,PBS,0.25%的胰酶(沒加edta),放37度烤箱預(yù)熱(此做法是減少4度的涼液體對細(xì)胞的刺激,以防細(xì)胞死亡)。
每次換液時(shí),一定要燒培養(yǎng)瓶口,做好無菌觀念。
先拋棄舊液,用PBS先沖凈殘留的血清,再加PBS用滴管輕輕的吹打細(xì)胞,將死細(xì)胞吹打掉。
加胰酶時(shí)注意:若用加edta的,記住了,在鏡下看到細(xì)胞在收縮時(shí),趕快吸出胰酶,加血清中止消化。血清可抑制胰酶的活性,但對edta無效。前后大概不到10秒。若用沒有加edta的,時(shí)間要適當(dāng)延長,看到細(xì)胞變?yōu)橛辛Ⅲw感時(shí),加血清,輕輕拍打,細(xì)胞就會散開。若團(tuán)塊大,可用滴管吹打。
動作一點(diǎn)要快,不能讓細(xì)胞離開培養(yǎng)箱時(shí)間太長。
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